Predefinição:Tabela141
Aparência
| AGENTES BIOLÓGICOS | Classificação (grupos) | Notas |
|---|---|---|
| 'Fungos | ||
| Acremonium falciforme | 2 | E |
| Acremonium kiliense | 2 | E |
| Acremonium potronii | 2 | E |
| Acremonium recifei | 2 | E |
| Acremonium roseogriseum | 2 | E |
| Alternaria anamorfo de Pleospora infectoria | 2 | E |
| Aphanoascus fulvescens | 2 | E |
| Aspergillus amstelodami | 2 | E |
| Aspergillus caesiellus | 2 | E |
| Aspergillus candidus | 2 | E |
| Aspergillus carneus | 2 | E |
| Aspergillus flavus | 2 | |
| Aspergillus fumigatus | 2 | |
| Aspergillus glaucus | 2 | E |
| Aspergillus oryzae | 2 | E |
| Aspergillus penicillioides | 2 | E |
| Aspergillus restrictus | 2 | E |
| Aspergillus sydowi | 2 | E |
| Aspergillus terreus | 2 | E |
| Aspergillus unguis | 2 | E |
| Aspergillus versicolor | 2 | E |
| Beauveria bassiana | 2 | E |
| Blastomyces dermatitidis (Ajellomyces dermatitidis) | 2 | A |
| Candida albicans | 2 | A |
| Candida lipolytica | 2 | E |
| Candida pulcherrima | 2 | E |
| Candida ravautii | 2 | E |
| Candida tropic | li | s 2 |
| Candida viswanathii | 2 | E |
| Chaetoconidium spp | 2 | E |
| Chaetomium spp | 2 | E |
| Chaetosphaeronema larense | 2 | E |
| Cladophialophora bantiana (Xylophora bantiana, Cladosporiumbantianum ou C. trichoides) | 2 | |
| Cladophialophora carrioni (Cladosporium carrioni) | 2 | |
| Cladosporium cladosporioides | 2 | E |
| Coccidioides immitis | 3 | A |
| Conidiobolus incongruus | 2 | E |
| Coprinus cinereus | 2 | E |
| Cryptococcus neoformans | 2 | |
| Cryptococcus neoformans var. gattii (Filobasidiella bacillispora) | 2 | A |
| Cryptococcus neoformans var. neoformans (Filobasidiella neoformans var. neoformans) | 2 | A |
| Cunninghamella geniculata | 2 | E |
| Curvularia pallescens | 2 | E |
| Curvularia senegalensis | 2 | E |
| Cylindrocarpon tonkinense | 2 | E |
| Drechslera spp | 2 | E |
| Emmonsia parva var. crescens | 2 | |
| Emmonsia parva var. parva | 2 | |
| Epidermophyton floccosum | 2 | A |
| Epidermophyton spp | 2 | |
| Exophiala (Wangiella) dermatit | di | s 2 |
| Exophiala moniliae | 2 | E |
| Fonsecaea compacta | 2 | |
| Fonsecaea pedrosoi | 2 | |
| Fusarium dimerum | 2 | E |
| Fusarium nivale | 2 | E |
| Geotrichum candidum | 2 | E |
| Hansenula polymorpha | 2 | E |
| Histoplasma capsulatum duboisii | 3 | |
| Histoplasma capsulatum var capsulatum (Ajellomyces capsulatus) | 3 | |
| Lasiodiplodia theobramae | 2 | E |
| Madurella grisea | 2 | |
| Madurella mycetomatis | 2 | |
| Madurella spp | 2 | |
| Microascus desmosporus | 2 | E |
| Microsporum aldouinii | 2 | A |
| Microsporum canis | 2 | A |
| Microsporum spp | 2 | A |
| Mucor rouxianus | 2 | E |
| Mycelia sterilia | 2 | E |
| Mycocentrospora acerina | 2 | E |
| Neotestudina rosatii | 2 | |
| Oidiodendron cerealis | 2 | E |
| Paecilomyces lilacinus | 2 | E |
| Paecilomyces variotti | 2 | E |
| Paecilomyces viridis | 2 | E |
| Paracoccidioides brasiliensis (na fase de esporulação apresenta maiorrisco de infecção) | 2 | |
| Penicillium chrysogenum | 2 | E |
| Penicillium citrinum | 2 | E |
| Penicillium commune | 2 | E |
| Penicillium expansum | 2 | E |
| Penicillium marneffei | 2 | A |
| Penicillium spinulosum | 2 | E |
| Phialophora hoffmannii | 2 | E |
| Phialophora parasitica | 2 | E |
| Phialophora repens | 2 | E |
| Phoma hibernica | 2 | E |
| Phyllosticta ovalis | 2 | E |
| Phyllosticta spp | 2 | E |
| Pneumocystis carinii | 2 | |
| Pyrenochaeta unguis-hominis | 2 | E |
| Rhizoctonia spp | 2 | E |
| Rhodotorula pilimanae | 2 | E |
| Rhodotorula rubra | 2 | E |
| Scedosporium apiospermum (Pseudallescheria boidii) | 2 | |
| Scedosporium prolificans (inflatum) | 2 | |
| Schizophyllum commune | 2 | E |
| Scopulariops acremonium | 2 | E |
| Scopulariops brumptii | 2 | E |
| Sporothrix schenckii | 2 | |
| Stenella araguata | 2 | E |
| Taeniolella stilbospora | 2 | E |
| Tetraploa spp | 2 | E |
| Trichophyton rubrum | 2 | |
| Trichophyton spp | 2 | |
| Trichosporon capitatum | 2 | E |
| Tritirachium oryzae | 2 | E |
| Volutella cinerescens | 2 | E |
Fontes:
1. Brasil (2004) Diretrizes Gerais para o trabalho em contenção com material biológico. SérieA: Normas e Manuais Técnicos. Ministério da Saúde, Secretaria de Ciência, Tecnologia e Insumos Estratégicos, Brasília: Ministério da Saúde, 60p.
2. UE (2000) Council Directive 2000/54/EC. OJ L 262, 17.10.2000, 21p.
3. ABSA (2005) Risk Group Classification for Infectious Agents. http://www.absa.org/resriskgroup.html, cessado em 11 de julho de 2005.
- (a) Encefalites transmitidas por carrapatos.
- (b) O vírus da hepatite D é patogênico apenas na presença de infecção simultânea ou secundária causada pelo vírus da hepatite B. Assim, a vacinação de pessoas que não sejam portadoras do vírus da hepatite B também imuniza contra a hepatite D (Delta).
- (c) Apenas para os tipos A e B.
- (d) Dois vírus estão identificados: um é o buffalopox tipo e o outro é uma variante do vírus Vaccinia.
- (e) Até o momento não há evidência de doença em seres humanos causada por retrovírus de origem símia. Como precaução, recomenda-se nível de contenção 3 para o trabalho com este agente.
- (f) Até o momento não há evidência de infecções em seres humanos causadas pelos agentes responsáveis pela encefalite espongiforme bovina. No entanto, recomenda-se o nível de contenção 2, no mínimo, para o trabalho com este agente em laboratório.